FL6000Dvojmodulní fluorescenční měřič chlorofylu

FL6000Dvojmodulní chlorofluorometr je nejnovější aktualizovaná verze dvoumodulního chlorofluorometru FL3500, který je určen jako silný výzkumný nástroj pro hloubkové zkoumání mechanismů fotosyntézy mikrořas, klorofylů nebo suspenzií cyst, jako jsou modrozelené nebo zelené řasy. Přístroj má dvoukanálovou měřicí kontrolu, která může řídit teplotu měřícího vzorku, a je vybaven jednorázovým světlem (STF), vestavěným řadou měřicích postupů, které mohou uživatelé upravit, a může provádět různé hloubkové mezinárodní studie chlorofluorescence. Hlavní strukturou je optická měřicí hlava s standardním vzorkovým pohárem pro suspenzi, vestavěnými 3 LED zdroji a 1 detektorem signálu PIN diody s převodem 1 MHz/16 bitů AD. Zisk a doba kreditu pro převod AD lze řídit pomocí softwaru. Detektor měří fluorescenční signál chlorofylu s časovým rozlišením až 4 µs (rychlá verze 1 µs).

Oblasti použití:

·Fotosyntetické vlastnosti rostlin a screening metabolických poruch

·Detekce biologického a nebiologického nátlaku

·Výzkum odolnosti vůči stresu nebo citlivosti rostlin

·Výzkum metabolického chaosu

·Výzkum pracovního mechanismu fotosyntetického systému

·Výzkum strategií reakce fotofyziologie nucených rostlin

Typické vzorky:

·Modré řasy (modré bakterie)

·Zelené řasy

·Klorozelená suspenze

·Cystická suspenze

·Rostlinné fragmenty

Funkce:

·Integrované měření fluorescence indukované chlorofylem, měření PAM (pulsní modulace), měření rychlé fluorescenční dynamiky OJIP, QA - reoxidační dynamika, převod stavu S, chlazení fluorescence a další měřicí programy jsou uznávány jako nejkomplexnější fluorescenční chlorofylem na světě.

·Dvobarevná modulační technologie pro měření světla s modulovaným fotochemickým světlem a kontinuálním fotochemickým světlem pro měření STF, TTF a MTF a technologií Fast Repetition Rate (FRR)

·Standardní časové rozlišení až 4 µs, rychlá verzeAž 1 µs, nejvyšší časové rozlišení chlorofluorometru

·Ovládací jednotka je dvoukanálová, může být připojena teplotní snímač pro regulaci teploty, připojena měřicí jednotka kyslíku pro měření Hillové reakce atd.

·Vysoká citlivost, minimální limit detekce 100 ng Chla/L

·Měření světla, optické světlo, nasycené jednoreflexní světelné zdroje Barva, intenzita lze přizpůsobit

·Barevný dotykový displej pro zobrazení fluorescenčních grafů v reálném čase

Technické parametry:

·Experimentální postup: měření Kautskyho fluorescenčního efektu; PAM (Pulzní modulace)Dynamika fluorescenčního potlačeníměření; Rychlé fluorescenční dynamické měření OJIP; QA - Reoxidační dynamika; S přeměna stavu; Rychlá fluorescenční indukce chlorofylu

• Fluorescentní parametry:

uPAMMěření dynamiky fluorescenčního potlačení: Měření křivky dynamiky fluorescenčního potlačení s možností výpočtu F₀Fm, Fv, F₀’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRvíce než 50 fluorescenčních parametrů chlorofylu;

uOJIPRychlé fluorescenční dynamické měření: měření rychlé fluorescenční dynamické křivky OJIP s výpočtem F₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀pro FV/F₀Fv / Fm, M0, plocha, pevná plocha, SM, SS, N, Phi_P₀psí_₀pro Phi_E₀pro Phi_D₀Phi_Pav, ABS / RC, TR₀/ RC, a to₀/ RCa DI₀/ RCvíce než 20 parametrů;

uQAQA-reoxidační kinetika: Měření křivky QA-reoxidační kinetiky pro přizpůsobení amplitud (A1, A2, A3) a časových konstant (T1, T2, T3) rychlé fáze, střední fáze a pomalé fáze QA-reoxidace

uSS-stavový test: Měření křivky fluorescenčního rozpadu v S-stavovém testu pro vhodný výpočet neaktivního světelného systému II (PSII)_XPočet reakcních center

uFlash fluorescence induction (FFL, pouze rychlá verze): pro vhodný výpočet efektivní plochy antény, připojení antény atd.

uPoskytuje uživatelsky přizpůsobený protokol umožňující heterogenitu antény PSII PSIIαse PSIIβAnalýza, efektivní rozřez antény PSII (sPSIIMěření parametrů (volitelné přizpůsobení)

uQA- křivka oxidační dynamiky aS-stavová zkouškaKřivka snížení fluorescence (Li，2010）

·Časové rozlišení (frekvence vzorkování): detektor s vysokou citlivostí, standardní verze s časovým rozlišením 4 µs a rychlá verze s 1 µs

·Minimální limit detekce: standardní verze 100ng Chla/L, rychlá verze 1μg Chla/L

·Ovládací jednotka: barevný dotykový displej pro zobrazení fluorescenčních grafů v reálném čase

·Měřicí místnost:

neboMěření blesku: 623nm červeno-oranžové světlo a 460nm modré světlo, doba blesku 2-5µs

oJednooběhový nasycený blesk: maximální intenzita světla 170000 µmol (fotony) / m².s, doba blesku 20–50 µs

oPersistentní fotochemické světlo: maximální intenzita světla 3500 µmol (fotony) / m².s

neboFluorescentní detektor: PIN fotodioda

neboADPřevodník: 16bit

neboZkušební trubka vzorku: plocha dna 10 x 10 mm, objem 4 ml

• Měřicí místnost na míru (volitelně): Měření barev světla, nasyceného záblesku a fotochemického světla (modrá, modrá, jantarová atd.) a detekčního pásma (ChlA, ChlB) lze přizpůsobit

• Další infračervené světlo (volitelné): pro měření F₀vlnová délka 730 nm

·Modul pro měření kyslíku (volitelné): Měření uvolňování kyslíku z řas

·Řízení teploty (volitelné): regulátor TR 6000 s regulací teploty v rozmezí 5–60 °C, přesnost 0,1 °C

• Elektromagnetické míchání (volitelné): pro míchání vzorků, aby se zabránilo usazení vzorků, ruční nastavení rychlosti nebo automatické ovládání softwarem

• Komunikační rozhraní: RS232 / USB

společnosti FluorWinSoftware: definovat nebo vytvářet experimentální schématy, nastavení ovládání světelného zdroje, výstupy dat, analytické zpracování a zobrazení grafů

Typické aplikace:

1. Výzkumníci Wang Qiang z Institutu vodní biologie Čínské akademie věd použili chlorofluorometer FL3500 (model před FL6000) a systém TL pro uvolňování tepla rostlin, aby prokázali, že tlak dusičnanů nejprve ovlivňuje stranu receptoru PSII Synechocystis sp. PCC 6803 (Zhan X, et al, 2017). Výzkum tohoto hloubkového mechanismu fotosyntézy často vyžaduje, aby oba nástroje byly provedeny společně.

2.Výzkumník Pan Ruanjiang z Ekologického a geografického ústavu v Xinjiangu Čínské akademie věd a jeho skupina použili fluorescenční chlorofyl FL3500 (model před FL6000) k hloubkovému výzkumu toxicity těžkých kovů, sůl, toxických sloučenin, herbicidů, pesticidů a antibiotik pro různé škodlivé látky v životním prostředí. Prostřednictvím unikátních metod měření fluorescence chlorofylu s vysokým rozlišením OJIP, jako je měření rychlé fluorescenční dynamiky, QA-re-oxidační dynamika a převod stavu S, FL3500 úplně odhaluje toxické mechanismy poškození fotosyntetického systému řas a jejich ekologické dopady v různých koncentracích a dobách zpracování. V současné době skupina Pan Zhuang publikovala více než dvacet článků na vysoké úrovni v mezinárodních časopisech SCI a v domácích hlavních časopisech pomocí FL3500 (předchozí model FL6000).

Místo původu: Česká republika

Reference:

1. Manaa A., et al. 2019. Tolerance slanosti quinoe (Chenopodium quinoaWilld) podle posouzení ultrastruktury chloroplastu a fotosyntetického výkonu. Environmentální a experimentální botanika 162: 103-114

2. Yu Z, et al. 2019. Citlivost Chlamydomonas reinhardtii na stres kadmium je spojena s fototaxí. Věda o životním prostředí: procesy a dopady 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Molekulární mechanismy aklimatace a adaptace teploty u mořských diatomů. Časopis ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Řešení otravné cyanobakterie eutrofizace prostřednictvím biotechnologie. Aplikované vědy 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Regulace funkce PSII vCyanotheceATCC 51142 během světlo-temného cyklu. Výzkum fotosyntézy 139(1–3): 461–473

6. Smythers A L, et al. 2019. Charakterizace účinku Poast naChlorella vulgarisnecílový organismus. Chemosféra 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Modulace thylakoidového proteomu u hrachových rostlin pěstovaných při různých záření: kvantitativní proteomické profilovánímodelový organismus pomocí transkriptomické integrace dat. Rostlinný deník 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Chlorofilový fluorescenční indukční a relaxační systém pro kontinuální monitorování fotosyntetické kapacity fotobioreaktorů. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulace kinetiky růstu a rozpadu fluorescence chlorofylu a změn absorbance souvisejících s P700 pomocí kinetické Monte-Carlové metody založené na pravidlech. Fotosyntézní výzkum. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY je vyžadován pro prevenci fotopoškození fotosystému II u mutantu s nedostatkem PsbM.Synechocystisč. PCC 6803. Fotosyntéza, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Specifické rozdíly v rychlosti opravy fotosystému II u picocyanobakterií korelují s rozdíly v hladinách proteinu FtsH a vzorcích expresi izoformy. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Transkriptomické reakce mořské cyanobakterieprokhlorokokuprodukty virové lýzy. Mikrobiologie životního prostředí, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. Protonová citlivost antény určuje strategii sběru fotosyntetického světla, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493